Научный журнал
Международный журнал экспериментального образования

ISSN 2618–7159
ИФ РИНЦ = 0,757

СРАВНИТЕЛЬНАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА НЕКОТОРЫХ СПОСОБОВ ГЛУБОКОЙ АНТИСЕПТИКИ СВЕЖИХ ИНФИЦИРОВАННЫХ РАН У ЖИВОТНЫХ

Безрук Е.Л. 1
1 ФГБОУ ВПО «Хакасский государственный университет им. Н.Ф. Катанова»
В статье проводиться оценка эффективности различных способов глубокой антисептики в процессе послеоперационного лечения случайных свежих ран с обширной зоной повреждения у животных с применением различных видов дренирования: трубчатого и мембранного.
домашние и сельскохозяйственные животные
гнойно-инфекционные осложнения
раневая болезнь
свежие случайные раны
дренажные диализирующие устройства
1. Белокуров Ю.Н., Греманицкий А.Б., Малофеев В.М. Сепсис. – М.: Медицина, 1983. – 206 с.
2. Виденин В.Н. Профилактика хирургической инфекции у животных. Асептика и антисептика ветеринарной хирургии: метод. пособие для студентов вет. фак-та очного и заочного обучения и слушателей ФПК. – СПб.: Изд-во СПбГАВМ, 2001. – 68 с.
3. Виденин В.Н. Клинические аспекты профилактики послеоперационных гнойно-воспалительных осложнений (ГВО) у животных. Актуальные проблемы ветеринарии: Тезисы докладов научной конференции профессорско-преподавательского состава, научных сотрудников и аспирантов Ленинградского ветеринарного института. – Л., 1991. – С. 18-19.
4. Ермолаев В.А., Семенов Б.С. Гемостазиологические параллели гнойной хирургической патологии у крупного рогатого скота. – BicH. Бшоцерюв. держ. агр. ун-ту: зб. наук, праць. – 1998. – Вип. 5. – С. 145-147.

Случайные раны с обширной зоной повреждения особенно часто осложняются развитием гнойно-инфекционных осложнений, даже после самой тщательной первичной хирургической обработки. В связи с этим интенсивная комплексная антисептика является необходимым условием послеоперационного ведения больных животных. Общепринято с этой целью использовать антибиотики и антисептики. По мнению Ю.Н. Белокурова (1983); и др., активность антибиотиков прямо пропорциональна их концентрации в ране, длительности и непрерывности воздействия. Во многом, эффективность антисептики определяется способом «доставки» препарата к эпицентру раневого воспаления и видовыми особенностями течения воспалительной реакции [2, 3, 4].

Целью данного исследования является сравнительная характеристика антисептической эффективности раневого диализа и традиционного дренирования случайных ран у животных после первичной хирургической обработки (ПХО).

Изучение динамики заживления ран, ближайших и отдаленных результатов лечения и профилактики раневой инфекции проводили в группах клинически больных животных, которых разделили на 2 группы.

В 1 клинической группе (опыт) (n = 165) применяли диализаты из полупроницаемых мембран, содержащие многокомпонентные растворы, которые обеспечивают постоянное дозированное поступление препаратов в организм. В качестве полупроницаемой мембраны использовали разработанные нами устройства, на основе целлюлозной гофрированной оболочки с толщиной стенки 2 мм и диаметром пор 1,5-3 мкм. Устройство вводили в раневую полость животных на завершающем этапе операции. Заполнение дренажа диализирующим раствором осуществляли по мере ее наполнения (1 раз в сутки) в течение 4-10 суток.

Во 2 клинической группе (n = 135) применяли известные способы послеоперационного лечения и дренирования. В частности, пассивное дренирование поливинилхлоридными трубками по Redon, через которые инфицированную раневую полость промывали смесью растворов диоксидина 1 % и новокаина 0,5 % в соотношении 1:1, а затем вводили мазь на гидрофильной основе левомеколь®. Кроме того, животным по показаниям применяли комплекс общей антибактериальной терапии и симптоматическое лечение.

Оценивали общее состояние больных животных. При наличии свежих ран обращали внимание на локализацию, глубину, степень зияния, форму краев, степень и объем повреждения околораневых тканей (мышц, костей), наличие ниш, карманов, полостей, инородных предметов, функциональных расстройств.

Бактериологические исследования смывов с раневой поверхности и из раневого канала, с целью изучения количественного и качественного состава микрофлоры в раневом процессе, проводили на 1-3-7-9 сутки. Отбор проб из раневого канала осуществляли тупфером, который помещали в 2 мл дистиллированной воды, получая исходное разведение 0,1 мл. Посев проб производили на жидкие и плотные питательные среды, инкубировали в термостате при 37 °С, в течение 24 часов. Обращали внимание на культурально-морфологические свойства выросших колоний (величина, форма, прозрачность, контур края, поверхность, цвет и консистенция) и количество микробов в 1 г ткани.

При исследовании уровня бактериального загрязнения ран, перед выполнением ПХО, установлено, что степень обсеменения тканей зависит от срока выполнения хирургической обработки, условий содержания. Результаты исследования показали, что у домашних животных, поступивших на лечение в течение 8 часов после травмы (собаки), рост микробов отсутствовал. У 56 (75,6 %) животных, поступивших от 10-24 часов с момента травмы, в первичных посевах преобладали микроорганизмы, выделенные в монокультуре. По видовому составу животные распределялись следующим образом: собак – 19 (34,0 %); кошек – 9 (34,48 %); лошадей – 18 (28,53 %); коров – 10 (19,23 %). В посевах преобладал стафилококк (St. aureus). Он был обнаружен у 13 собак (68,42 %), 6 кошек (66,68 %), 12 лошадей (66,7 %) и 7 коров (70,01 %). Кроме того, в монокультурах у собак и лошадей, обнаруживали Pr. Vulgaris (15,78 % и 16,56 % соответственно), у кошек и крупного рогатого скота – Ech. Coli (22,21 % и 29,9 % соответственно). Обращало на себя внимание отсутствие в монокультурах свежих ран у исследованных животных стрептококков и анаэробной микрофлоры.

У 91 (36,3 %) животного, с более отдаленными сроками ПХО, отмечали ассоциативное обсеменение области повреждения: стафилококк в ассоциации со стрептококком, кишечной палочкой и протеем.

Ассоциации микроорганизмов обнаружены у 17 собак (30,9 ± 5,48 %), 13 кошек (44,8 ± 3,45 %), 39 коров (75,00 ± 1,65 %) и 22 лошадей (34,92 ± 4,23 %). Преобладающей культурой в ассоцияциях у лошадей, собак и кошек являлся золотистый стафилококк и протей (до 100 %). У крупного рогатого скота – стрептококк и кишечная палочка. У других видов животных удельный вес стрептококков в ассоциациях был несколько ниже (до 68 %). При укушенных ранах в 26 % была выделена грамм (-) микрофлора (таблица).

Уровень бактериального загрязнения случайных ран при проведении ПХО

Вид микрофлоры

Собаки

Кошки

К.р.с.

Лошади

M ± m %

n

M ± m %

n

M ± m %

n

M ± m %

n

Посев роста

не дал

34,0 ± 3,03

19

20,68 ± 2,9

6

5,76 ± 1,8

3

11,5 ± 2,97

23

В монокультуре

34,0 ± 3,03 (100)

19

34,48 ± 5,03 (100)

9

19,23 ± 3,4 (100)

10

28,53 ± 5,87 (100)

18

Стафилококк

68,42 ± 2,3

13

66,68 ± 4,2

6

70,01 ± 4,32

7

66,7 ± 5,7

12

Кишечная палочка

10,52 ± 1,05

2

22,21 ± 3,54

2

29,9 ± 2,12

3

11,12 ± 1,06

2

Протей

15,78 ± 2,5

3

11,2 ± 1,04

1

0

0

16,56 ± 5,21

3

Синегнойная палочка

5,26 ± 0,03

1

0

0

 

-

5,46 ± 1,14

1

В ассоциациях

30,9 ± 5,48 (100)

17

44,8 ± 3,45 (100)

13

75,00 ± 1,65 (100)

39

34,92 ± 4,23 (100)

22

Стафилококк

94,1 ± 5,5

16

76,92 ± 4,87

10

92,3 ± 6,6

36

100

22

Стрептококк

58,82 ± 9,16

10

69,23 ± 6,16

9

97,43 ± 3,2

38

63,6 ± 12,4

14

Кишечная палочка

11,76 ± 2,5

2

15,38 ± 2,76

2

89,74 ± 11,2

35

31,81 ± 2,95

7

Протей

94,1 ± 5,45

16

92,3 ± 6,3

12

20,51 ± 3,12

8

100

22

Синегнойная палочка

41,17 ± 10,4

7

61,53 ± 1,5

8

7,69 ± 2,13

3

45,5 ± 6,34

10

Всего

100

55

100

29

100

52

100

63

Примечание. Р - 0,1.

По завершении хирургической обработки с применением антисептики только у 16 (27,7 %) животных из 56, с монокультуральным обсеменением ран, был получен рост микрофлоры. На 4-6 сутки 100 % посевов из ран и отделяемого дренажных диализирующих устройств, были стерильными. У 46 животных (опытная группа) с ассоциативным обсеменении ран, был выполнен раневой диализ. После завершения первичной хирургической обработки, только у 17,39 %, в монокультуре присутствовал стрептококк. У остальных 78,26 % животных посевы роста микрофлоры не давали. На 3 день диализа единичное количество колоний отмечали только у 2,17 % (крупный рогатый скот). У 45 животных контрольной группы, выявлен рост ассоциаций на 3 сутки в 6,7 % случаев, в 22 % – единичные колонии в монокультуре, у 32 (71,1 %) – стерильные посевы. На 7 сутки у животных контрольной группы обнаружена реинфекция у 4 (9 %) животных.

При исследовании антибиотикочувствительности возбудителей хирургической инфекции было установлено, что стафилококки наиболее чувствительны к цефалоспоринам, фторхинолонам и линкозаминам.

При первичном бактериологическом исследовании микрофлора ран отличалась достаточно высокой чувствительностью к 2–3 антибиотикам из 6–7. Большое влияние на чувствительность микроорганизмов к антибиотикам оказывает длительное их применение в анамнезе. Стафилококки у животных, ранее получавших антимикробные препараты, были полирезистентнее к наиболее распространенным из них.

У крупного рогатого скота в ассоциации выделялись антибиотикоустойчивые штаммы энтеробактерий. Которые были чувствительны к только цефалоспоринам 3 поколения (цефтиофур натрия), аминогликозидам, фторхинолонам.

У животных с укушенными ранами (лошади, собаки) обнаруживали неферментирующие грамотрицательные бактерии, с чувствительностью к макролидам, азалидам и полимиксину

В результате применения различных способов лечения и дренирования случайных свежих ран у животных, установлено следующее.

По завершении хирургической обработки с применением антисептики только у 16 (27,7 %) животных из 56, с монокультуральным загрязнением ран, был получен рост микрофлоры. У 12 животных со случайными укушенными ранами и у 2 животных с огнестрельными ранами.

Изучение количественного состава микрофлоры показало, что бактериальная обсемененность в 1 г тканей, при случайных ранах, составляла 105. После выполнения ПХО, она снизилась до 104 микробных тел на 1 г тканей раны, а на 5 сутки после обработки, посевы были стерильны у всех животных. Материал, исследуемый в эти сроки, обладал бактерицидной активностью при помещении его в чашки Петри на зараженный микроорганизмами питательный агар.

Исследования показали, что применение раневого диализа приводило к быстрому разрушению ассоциаций из 2 и 3 видов микроорганизмов, в отличие от животных контрольной группы.

Бактериологические исследования подтверждают высокую антибактериальную активность диализата, которая обеспечивалась введением в его состав антибиотиков и антисептиков. Введение в полость мембранного дренажа один раз в сутки антибиотиков и антисептиков в количестве разовой терапевтической дозы, позволяет в течение 4,3 ± 1,3 сутки (Р > 0,001) подавлять микрофлору в ране. Поддержание в полости раны равномерно высокой концентрации антибактериальных веществ, в сочетании с активной осмотерпией, создает благоприятные условия для регенеративных процессов в свежей ране и не допускает развития гнойно-инфекционных осложнений.


Библиографическая ссылка

Безрук Е.Л. СРАВНИТЕЛЬНАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА НЕКОТОРЫХ СПОСОБОВ ГЛУБОКОЙ АНТИСЕПТИКИ СВЕЖИХ ИНФИЦИРОВАННЫХ РАН У ЖИВОТНЫХ // Международный журнал экспериментального образования. – 2016. – № 9-2. – С. 277-279;
URL: http://www.expeducation.ru/ru/article/view?id=10494 (дата обращения: 15.06.2021).

Предлагаем вашему вниманию журналы, издающиеся в издательстве «Академия Естествознания»
(Высокий импакт-фактор РИНЦ, тематика журналов охватывает все научные направления)

«Фундаментальные исследования» список ВАК ИФ РИНЦ = 1.074